Intruksi
Digunakan sebagai alat bantu menghitung telur cacing, eggs per gram (epg), metode Kato–Katz (Kato–Katz Technique).
Metode Kato–Katz
Metode Kato-Katz adalah metode diagnostik yang direkomendasikan untuk memantau program pengobatan skala besar yang diterapkan untuk mengendalikan infeksi cacing yang ditularkan melalui tanah karena formatnya yang sederhana dan kemudahan penggunaannya di lapangan. Teknik alternatifnya adalah McMaster dan FLOTAC.Bahan dan alat yang harus disiapkan adalah:
- Tongkat aplikator kayu.
- Layar (baja tahan karat, nilon atau plastik: mesh 60-105 μm).
- Templat (baja tahan karat, plastik, atau karton). Lubang 9 mm pada sebuah template setebal 1 mm akan menghasilkan sekitar 50 mg feses; lubang 6 mm pada templat setebal 1,5 mm, 41,7 mg; dan lubang 6,5 mm pada templat setebal 0,5 mm, 20 mg. Templat dengan ukuran yang sama harus selalu digunakan untuk memastikan keterulangan dan perbandingan data prevalensi dan intensitas.
- Spatula (plastik).
- Slide mikroskop (75 x 25 mm).
- Plastik hidrofilik (tebal 40–50 μm, ukuran strip 25 x 30 atau 25 x 35 mm).
- Stoples beralas datar dengan penutup, tang, dan tisu toilet atau tisu penyerap.
- Koran.
- Gliserol-malachite green (1 mL larutan malachite green 3% ditambahkan ke 100 mL gliserol dan 100 ml air suling dan aduk rata). Larutan ini dituangkan ke dalam potongan plastik di dalam stoples dan dibiarkan setidaknya 24 jam sebelum digunakan.
Prosedur metode Kato-Katz pertama kali meletakkan sedikit sampel feses di atas koran dan tekan selembar nilon di atasnya. Dengan menggunakan spatula, kikis kotoran yang telah diayak dari saringan. Beri label pada kaca objek dengan nomor sampel dan letakkan templat berlubang di tengah kaca objek. Isi lubang pada cetakan dengan bahan feses yang sudah dibuahi, hindari gelembung udara dan ratakan feses untuk menghilangkan sisa bahan. Angkat templat dengan hati-hati dan masukkan ke dalam ember berisi air yang telah dicampur dengan deterjen pekat dan disinfektan agar dapat digunakan kembali.
Kemduian meletakkan sepotong plastik yang telah direndam semalaman dalam larutan gliserol, di atas sampel feses. Balikkan kaca objek mikroskop dan tekan dengan kuat sampel pada strip plastik pada kaca objek mikroskop lain atau pada permukaan halus dan keras untuk menyebarkan feses dalam bentuk lingkaran. Ambil kembali kaca objek secara hati-hati dengan menggesernya perlahan ke samping agar strip plastik tidak terlepas atau terlepas. Tempatkan slide di bangku dengan plastik menghadap ke atas. Air menguap sementara gliserol membersihkan kotoran. Ketika diklarifikasi, cetakan koran dapat terbaca melalui noda tinja.
Untuk semua telur kecuali telur cacing tambang, simpan kaca objek selama satu jam atau lebih pada suhu kamar untuk membersihkan kotoran sebelum pemeriksaan di bawah mikroskop. Untuk mempercepat pembersihan dan pemeriksaan, kaca objek dapat ditempatkan dalam inkubator bersuhu 40 °C atau disimpan di bawah sinar matahari langsung selama beberapa menit. Telur A. lumbricoides dan T. trichiura akan tetap terlihat dan dikenali selama berbulan-bulan. Telur cacing tambang akan hilang dengan cepat dan tidak akan terlihat lagi setelah 30–60 menit. Telur schistosoma mungkin dapat dikenali hingga beberapa bulan, namun lebih baik jika pemeriksaan preparat slide dilakukan dalam waktu 24 jam. Apusan harus diperiksa secara sistematis. Kemudian, kalikan dengan angka yang sesuai untuk mendapatkan jumlah telur per gram feses (dengan 20 jika menggunakan cetakan 50 mg; dengan 50 untuk cetakan 20 mg; dan dengan 24 untuk cetakan 41,7 mg).
Literatur
Feedback:
Post a Comment